实验模型：细胞脑原位接瘤模型
小鼠品系：BALB/c-nu
接瘤方式：脑原位接瘤，n个细胞/只
鼠龄：4-6周龄，16-18g
主要实验器材：10μL微量注射器、脑立体定位仪
实验步骤：
一、 细胞部分
1. 准备仪器和耗材：无菌的0.5mL离心管，1mL、200μL、10μL枪和枪头、胰酶、PBS、1640（或DMEM，无血清），细胞计数板。
2. 细胞消化后离心，弃上清。
3. 加入1mL 1640吹打细胞使其重悬，取10μL细胞悬液，加90μL培养基稀释10倍后计数。
4. 计数后将细胞悬液离心，重新加入适量1640配制细胞密度为2.5×106个/mL的细胞悬液，放于冰中待用。
二、 动物部分
1. 准备仪器和耗材：纸巾、棉签、75%酒精、剪刀、镊子、缝合线和缝合针、1%戊巴比妥钠、1mL注射器、10μL微量注射器、计时器、消炎粉、热垫、脑立体定位仪。
2. 异氟烷麻醉裸鼠或者腹腔注射1%戊巴比妥钠（0.14mL/20g）麻醉裸鼠（麻醉效果不好），置于脑立体定位仪上，固定好小鼠头部，检查是否固定成功：鼻对正中，头部不动，提尾不掉，目测大脑放置水平。
3. 用剪刀沿头部正中线向耳朵方向纵向切开1-2cm的切口，露出头骨的矢状线和冠状缝合线，找到前囟（Bregma，避免与前囟远端的窦区混淆）。
4. 先用75%乙醇冲洗微量注射器，排出气泡，再用PBS冲洗3-5次。然后吸取2μL细胞密度为2.5×106个/mL细胞悬液，将微量注射器固定在支架上。
5. 把针头移动到前囟点，XY轴归零，然后将X轴移动到××mm，Y轴移动到××mm处，用笔在颅骨的该区域标记标记记号点，用颅骨钻在注射点钻出一个孔（创口尽量小但是又不妨碍实验）。
6. 微调针头到注射点正上方，调整Z轴到前囟点后将Z轴归零。
7. Z轴下降到××mm插入颅内，停留3min，Z轴退针0.5mm，使颅内形成一个小室，在2min内缓慢注入肿瘤细胞，然后每1min退针0.5mm，防止漏液。
8. 用5-0号缝合线缝合头部皮肤，涂抹上消炎粉。将动物放在热垫上，待动物清醒后放回笼内继续观察。
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